-20℃ 避光

1.長(zhǎng)期不用可以-80℃保存。避免反復(fù)凍融。 2.探針液A為DMSO溶液，冬季氣溫較低時(shí)為凝固狀態(tài)，極易粘附在管壁、吸頭壁。注意需要加熱融解，變成液體狀態(tài)后離心至管底部再開(kāi)蓋。 3.可以用手捂住使其融解或37℃短時(shí)間水浴。吸頭也需要放在培養(yǎng)箱預(yù)熱，否者容易再次凝固在吸頭內(nèi)壁產(chǎn)生損耗。 4.試劑拆封后請(qǐng)盡快使用完！

三個(gè)月

激光共聚焦/流式/熒光分光光度計(jì)/熒光酶標(biāo)儀

細(xì)胞

1.使用方便：操作步驟簡(jiǎn)單； 2.安全：無(wú)需處理放射性物質(zhì)。； 3.線性范圍寬，可檢測(cè)葡萄糖攝取的微小變化。

1.激光共聚焦/流式/熒光分光光度計(jì)/熒光酶標(biāo)儀 2.離心機(jī) 3.移液器 4.冰箱 5.冰盒

1.不含葡萄糖的培養(yǎng)基 2.HBSS

1.離心管 2.吸頭 3.一次性手套 4.黑色透明底熒光專用96孔板

1.預(yù)實(shí)驗(yàn)很重要。必須要做預(yù)實(shí)驗(yàn)，在正式實(shí)驗(yàn)之前取少量樣本優(yōu)化實(shí)驗(yàn)條件，并像正式樣本一樣認(rèn)真進(jìn)行，看實(shí)驗(yàn)結(jié)果是否可行，實(shí)驗(yàn)條件是否適合自己的樣本。由于生物樣本的多樣性，不同樣本的實(shí)驗(yàn)條件通常差異較大，同種細(xì)胞的不同模型下需要的實(shí)驗(yàn)條件也可能不同，為了避免浪費(fèi)正式樣本和試劑，一定要提前預(yù)實(shí)驗(yàn)優(yōu)化實(shí)驗(yàn)條件。 2.螺旋蓋微量試劑管裝的試劑在開(kāi)蓋前請(qǐng)短暫離心，將蓋內(nèi)壁上的液體收集至管底，避免開(kāi)蓋時(shí)液體灑落。 3. G61染色液為DMSO溶液，冬季氣溫較低時(shí)在室溫時(shí)為凝固狀態(tài)，極易粘附在管壁、吸頭壁。注意需要加熱溶解，吸頭也需要放在培養(yǎng)箱預(yù)熱，否者容易再次凝固在吸頭內(nèi)壁產(chǎn)生損耗。 4.使用前，先將本品取出回溫至室溫，并對(duì)其進(jìn)行簡(jiǎn)短離心使DMSO溶液集中于管底。

試劑準(zhǔn)備： 根據(jù)樣本數(shù)量，用37℃預(yù)熱的不含葡萄糖的培養(yǎng)基將G61探針500-1000倍稀釋。充分混勻，配制成染色工作液，備用。 根據(jù)樣本數(shù)量，用洗滌液B2將洗滌液B1進(jìn)行20倍稀釋，配制成洗滌液B，然后用冰浴的HBSS將洗滌液B進(jìn)行50倍稀釋。充分混勻，配制成洗滌液工作液，冰浴備用。 樣本檢測(cè)： 1.將細(xì)胞接種到培養(yǎng)皿或孔板中，制備相應(yīng)的待檢測(cè)模型。 【注】： ?以下以貼壁細(xì)胞原位檢測(cè)為例，懸浮細(xì)胞按相應(yīng)步驟操作即可。需流式檢測(cè)時(shí)，用 消化收集細(xì)胞。 2.培養(yǎng)好的待測(cè)細(xì)胞去除培養(yǎng)基，用預(yù)熱的不含葡萄糖的培養(yǎng)基清洗 2-3 次。 3.添加預(yù)熱的不含葡萄糖的培養(yǎng)基，37℃、5% CO2 培養(yǎng)箱中培養(yǎng) 15-20 min。 4.去除培養(yǎng)基，加入預(yù)熱的染色工作液，37℃、5% CO2 培養(yǎng)箱中培養(yǎng) 15 min。 【注】： ?染色工作液用量以相應(yīng)的培養(yǎng)器皿的培養(yǎng)基量為準(zhǔn)。例如24孔板一般用300 μl染色液。以有效覆蓋細(xì)胞為準(zhǔn)。 ?不同樣本的染色時(shí)間不同，需要根據(jù)預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果調(diào)整。一般在5-60分鐘范圍內(nèi)調(diào)整染色時(shí)間。15分鐘適用于很多常見(jiàn)樣本。 ?必須使用37℃預(yù)熱的染色工作液。 5.去除染色液，用預(yù)冷的洗滌液工作液清洗2次。 【注】： ?加入洗滌液后輕微晃動(dòng)然后直接移除即可。 ?必須使用預(yù)冷的洗滌液工作液。 6.去除洗滌液，添加預(yù)冷的洗滌液工作液，室溫靜置 5 min。 【注】： ?此步驟必須靜置5分鐘，為第三次洗滌的必要步驟，有利于減少背景。 ?如果背景高，可以再洗滌第4次。 ?必須使用預(yù)冷的洗滌液工作液。 7.去除洗滌液，添加預(yù)冷的洗滌液工作液，用共聚焦顯微鏡進(jìn)行拍照分析。

1.活細(xì)胞染色后，可以進(jìn)行細(xì)胞固定的操作嗎？？ 由于固定操作時(shí)熒光探針會(huì)從細(xì)胞內(nèi)漏出，染色后不能進(jìn)行細(xì)胞固定。 2.用熒光酶標(biāo)儀檢測(cè)，對(duì)微孔板有什么特別要求嗎？ 需要使用熒光檢測(cè)用的細(xì)胞培養(yǎng)板。 3.被細(xì)胞攝入后，會(huì)被分解或代謝掉嗎？ 實(shí)驗(yàn)過(guò)程中的操作不會(huì)造成分解。 4.無(wú)法觀察到熒光信號(hào)變化，是什么原因？ 可能時(shí)由于染色條件需要優(yōu)化。預(yù)實(shí)驗(yàn)的時(shí)候可以先從稀釋濃度（250倍~1000倍）、染色時(shí)間(5 min~1 h)范圍內(nèi)進(jìn)行摸索。 5.熒光染料可以在細(xì)胞內(nèi)停留多長(zhǎng)時(shí)間？ 一般在室溫下可以保持在細(xì)胞內(nèi)1 小時(shí)左右，不同的細(xì)胞種類，時(shí)間會(huì)有一定差別。 6.試劑盒可以定量嗎？ 不可以定量。本試劑盒是葡萄糖攝取能力強(qiáng)弱或增減的定性檢測(cè)試劑盒。